Abstract:
การฟอกฆ่าเชื้อเมล็ดของต้นดอกแตรวง (Lilium primulinum Baker var. burmanicum Stearn) จากฝักที่แก่เต็มที่และแตกโดยเปรียบเทียบวิธีการฟอก 2 วิธีได้แก่ 1) ฟอก 1 ครั้ง ด้วยสารละลายคลอรอกซ์เข้มข้น 20 เปอร์เซ็นต์ นาน 20 นาที 2) ฟอกฆ่าเชื้อในสารละลายคลอรอกซ์ 2 ครั้ง ที่ความเข้มข้น 20 เปอร์เซ็นต์ 15 นาที และความเข้มข้น 10 เปอร์เซ็นต์ นาน 15 นาทีพบว่า การฟอก 2 ครั้ง เกิดการปนเปื้อนเชื้อจุลินทรีย์ 10 เปอร์เซ็นต์ ซึ่งนอ้ยกว่า การฟอก 1 ครั้ง ที่มีการปนเปื้อนเชื้อฯ 25 เปอร์เซ็นต์ เมื่อนำต้นกล้าที่มีใบ 4 ใบ มาเพาะเลี้ยงเพื่อเพิ่มปริมาณยอด ชักนำให้เกิดหัวบนอาหาร สูตร MS ที่เติม thidiazuron (TDZ) ความเข้มข้น 0,1 และ 3 ไมโครโมลาร์ร่วมกับ 1-naphthaleneacetic acid (NAA) ความเข้มข้น 0.5 และ 1 ไมโครโมลาร์และอาหารที่เติม chlormequat chloride (CCC) ความเข้มข้น 0, 10, 20 และ 40 ไมโครโมลาร์ พบว่าต้นที่ได้รับ NAA 0.5 ไมโครโมลาร์เท่านั้น ที่มีการพัฒนาของยอดเพิ่มขึ้นเป็น 2.7 ± 0.15 ยอด เมื่อเพาะเลี้ยงเป็นเวลา 12 สัปดาห์ส่วนต้นกล้าที่ได้รับ CCC ทุกความเข้มข้น มีการพัฒนาเป็นหัวเมื่อเพาะเลี้ยงเป็นเวลา 4 สัปดาห์แต่ CCC ความเข้มข้น 10 ไมโครโมลาร์สามารถกระตุ้น ให้เกิดหัวที่มีขนาดใหญ่ที่สุด มีเส้นผ่านศูนยก์ลาง 6.2 ± 2.52 มิลลิเมตรและเมื่อเพาะเลี้ยงต่อไปอีก 8 สัปดาห์ ทำให้เกิดหัวย่อยจำนวน 2.7±1.21 หัว จากนั้น นำหัวย่อยที่มีใบ 4 ใบ มาเพาะเลี้ยงเพื่อเพิ่มขนาดบนอาหารสูตร MS ที่เติม CCC, paclobutrazol (PAC) และ daminozide (B-9) ที่ความเข้มข้น 0, 10, 20 และ 40 ไมโครโมลาร์ และ jasmonic acid (JA) ที่ความเข้มข้น 0, 1, 3 และ 5 ไมโครโมลาร์ร่วมกับ ซูโครสความ เข้มข้น 30, 60 และ 90 กรัมต่อลิตร พบว่า สารชะลอการเจริญเติบโตทั้งสามชนิด ไม่มีผลต่อการเพิ่ม ขนาดหัวย่อย อย่างไรก็ตาม การเติม B-9 ความเข้มข้น 40 ไมโครโมลาร์ทำให้หัวย่อยมีเส้นผ่านศูนย์กลางเพิ่มขึ้นมากกว่าชุดควบคุม 28 เปอร์เซ็นต์ ส่วนการเติม JA ร่วมกับซูโครส ไม่มีผลต่อการ เพิ่มขนาดหัวย่อยอย่างมีนัยสำคัญ อย่างไรก็ตามการเติมซูโครส 60 กรัมต่อลิตร โดยไม่เติม JA ทำให้ เปอร์เซ็นต์การเปลี่ยนแปลงขนาดเส้นผ่านศูนยก์ลางหัวย่อยสูงสุด มากกว่าชุดควบคุม 16เปอร์เซ็นต์ รองมาเป็นอาหารที่เติม JA ความเข้มข้น 1 ไมโครโมลาร์ร่วมกับ ซูโครส 30 กรัมต่อลิตร ทำให้ เปอร์เซ็นต์การเปลี่ยนแปลงขนาดเส้นผ่านศูนยก์ลางสูงมากกว่าชุดควบคุม 12 เปอร์เซ็นต์
Seeds of Lilium primulinum Baker var. burmanicum Stearn from mature dehisced capsule were disinfected comparing two methods: 1) using 20% clorox for 20 minutes 2) using 20% clorox for 15 minutes and followed by 10% clorox for 10 minutes. The results showed that the method two gave the lower rate of contamination (10%) than the method one (25%). For shoot multiplication and bulb formation, seedlings with 4 leaves were transferred onto MS medium supplemented with 0, 1 and 3µM thidiazuron (TDZ) in combination with 0.5 and 1µM 1-naphthaleneacetic acid (NAA) and MS medium supplemented with 0, 10, 20and 40µMchlormequatchloride(CCC). It was found that shoot number of seedlings on 0.5 µM NAA without TDZ increased to 2.7 ± 0.15 shoots after cultured for 12 weeks. Whereas, bulb formation was found in seedlings treated with CCC at all concentrations after 4 weeks of culture. However, CCC at 10 µM gave the highest bulb size at 6.2 ± 2.52 mm in diameter. After extending the incubation time for another8 weeks, those bulbs formed 2.7 ±1.21 bulblets. Then,bulblets with 4 leaves were transferred onto medium with CCC, paclobutrazol (PAC) and daminozide (B-9) at the concentrations of 0, 10, 20 and 40 µM and jasmonic acid (JA) at 0, 1, 3 and 5 µM in combination with sucrose at 30, 60 and 90 g/l for increasing bulb size. The results showed that all three growth retardants have no effect on increasing bulblet size, however 40 µM B-9 exhibited the highest changing percentage of bulblet diameter at 28% higher than that of the control. In addition, JA in combination with sucrose showedno significant effect on the increasing bulblet size. Nevertheless, added sucrose 60 g/l without JA gave the highest changing percentage of bulblet diameter which higher than the control at 16 % followed by the treatment of 1 µM JA in combination with 30 g/l sucrose which gave the changing percentage of bulblet diameter at 12% higher than the control.